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冰冻切片免疫荧光染色步骤

冰冻切片免疫荧光染色步骤

(1)冰冻切片取出,室温放置使其干燥后,用冷丙酮于4℃固定10分钟。

(2)切片用0.01MPBS清洗后加入1.2%双氧水作用30分钟,以除去非特异染色。

(3)0.01M PBS清洗,3次×10分钟。

(4)0.3%Triton X-100作用30分钟。

(5)加入以抗体稀释液(含1%BSA的0.01M PBS,pH7.4)稀释至工作浓度的一抗,4℃过夜。

(6)0.01M PBS清洗,3次×10分钟。

(7)加入荧光抗体TRITC-IgG(1:100)或FITC-IgG(1:100),室温孵育2小时。

(8)0.01M PBS清洗,3次×10分钟。

(9)缓冲甘油封片,荧光显微镜下观察。

对照组:采用空白对照:除用0.01MK PBS代替一抗外,其余程序与实验组相同。

载玻片处理步骤:

(1)硫酸浸泡过夜。

(2)自来水冲洗干净后双蒸水冲洗3遍。

(3)晾干后在0.1%明胶中快速浸泡后取出。

室温晾干或37℃烤干备用。

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冰冻切片免疫荧光染色及HE染色流程

冰冻切片免疫荧光染色流程(表面分子,以CD4为例) (1)冰冻切片室温晾干15分钟; (2)用组化油笔将待染组织圈好,置PBS中浸泡10分钟,以去除OCT;(3)用含10%正常山羊血清的PBS室温封闭切片1小时(此步可以不洗涤,把封闭液吸干即可); (4)加入CD4单抗(1:100; SeroTec, Inc, Raleigh, NC, USA),4℃孵育过夜;(5)PBS洗3次,每次10分钟; (6)加入罗丹明标记的羊抗小鼠的IgG二抗(1:50; Sigma公司),37℃孵育1小时; (7)PBS洗3次,每次15分钟; (8)封片后,荧光显微镜观察结果并拍照; (9)在每切片中随机选择5个视野计数阳性细胞数。 ` 注意事项:(1)整个实验过程中勿使表面干燥 (2)稀释、加二抗(荧光抗体)及此后的洗涤过程中注意避光附注1:如目的分子为胞内分子,各种液体中需要加透膜剂0.3%TrixtonX100。 附注2:所用液体(表面分子染色不用0.3%TrixtonX100): (1)pH7.4 0.01MPBS: 配方为:0.1MPBS 100ml+ddH2O 900ml+NaCl 7.65g 0.1MPBS配方为:Na2HPO4 23g+NaH2PO4﹒2H2O 5.9g+NaCl 17g定容至2000ml,高压,pH7.2-7.4

(2)洗涤液:0.3%TrixtonX100-pH7.4 0.01MPBS,分装15ml/支-20℃保存 (3)封闭液:10%NGS-0.3%TrixtonX100-pH7.4 0.01MPBS,分装1.2ml/支-20℃保存 (4)抗体稀释液:1%BSA-0.3%TrixtonX100-pH7.4 0.01MPBS,分装 1ml/支-20℃保存 一、操作方法及步骤: ①取材,未能固定的组织取材,不能太大太厚,厚者冰冻费时,大者难以切完整,最好为24×24×2mm。 ②取出组织支承器,放平摆好组织,周边滴上包埋剂,速放于冷冻台上,冰冻。小组织的应先取一支承器,滴上包埋剂让其冷冻,形成一个小台后,再放上细小组织,滴上包埋剂。 ③将冷冻好的组织块,夹紧于切片机持承器上,启动粗进退键,转动旋钮,将组织修平。 ④调好欲切的厚度,根据不同的组织而定,原则上是细胞密集的薄切,纤维多细胞稀的可稍为厚切,一般在5~10um间。 二、冰冻切片时的注意事项: ①防卷板及切片刀和持刀架上的板块应保持干净,需经常用毛笔挑除切片残余和用柔软的纸张擦。有时需要每切完一张切片后就用纸擦一次。因为这个地方是切片通过和附贴的地方,如果有残余的包埋剂粘于刀或板上,将会破坏甚至撕裂切片,便切片不能完整切出。 ②多例多块组织同时需做冰冻切片时,可各自放于不同的支承器上,于冷冻台上冻起来,然后依据不同的编号,依序切片,这样做既不费时也不会乱。 ③放置组织冰冻前,应视组织的形状及走势来放置,所谓“砍柴看柴势”,切片也是如此,如果胡乱放置,就不能收到很好的效果。

免疫荧光双染完整版

免疫荧光双染集团标准化办公室:[VV986T-J682P28-JP266L8-68PNN]

免疫荧光双染 在同一组织细胞标本上需要同时检测两种抗原时,需进行双重荧光染色。双重免疫荧光标记法(doubleimmunofluorescencelabelingmethod)也分为直接法和间接法。 冰冻切片荧光tunel+免疫荧光双标实验步骤 1、冰冻切片固定:冰冻切片从冰箱拿出来复温,晾干水分,冷丙酮固定10min,待丙酮完全 干后于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。 2、修复:切片稍甩干后用组化笔在组织周围画圈(防止液体流走),在圈内滴加蛋白酶K 工作液(蛋白酶K储存液用PBS?1:9稀释)覆盖组织,37度温箱孵育30min。将玻片置于PBS (PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。 3、破膜:切片稍甩干后在圈内滴加破膜工作液覆盖组织,常温下孵育20min,将玻片置于 PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。 4、加试剂1,2:按片子数量和组织大小取tunel试剂盒内适量试剂1(TdT)和试剂2(dUTP)按 2:29混合(试剂1,2为现配现用),加到圈内覆盖组织,切片平放于湿盒内,37℃恒温孵育2小时,湿盒内加少量水保持湿度。 5、BSA封闭:将玻片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min,在圈内滴加 用3%BSA均匀覆盖组织,室温封闭30min。 6、加一抗:轻轻甩掉封闭液,在切片上滴加PBS按一定比例配好的一抗,切片平放于湿盒内 4°C孵育过夜。(湿盒内加少量水防止抗体蒸发) 7、加二抗:玻片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。切片稍甩干后在 圈内滴加与一抗相应种属的二抗覆盖组织,避光室温孵育50min。 8、DAPI复染细胞核:切片用PBS(PH7.4)洗涤3次,每次5min。去除PBS后在圈内滴加DAPI染 液,避光室温孵育10min。 9、封片:玻片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。切片稍甩干后用 抗荧光淬灭封片剂封片。 10、镜检拍照:切片于尼康倒置荧光显微镜下观察并采集图像。(紫外激发波长330- 380nm,发射波长420nm;FITC绿光激发波长465-495nm,发射波长515-555?nm;CY3红光激发波长510-560,发射波长590nm) 石蜡切片荧光tunel+免疫荧光双标实验步骤 1、石蜡切片脱蜡至水:依次将切片放入二甲苯Ⅰ15-20min-二甲苯Ⅱ15-20min-无水乙醇 Ⅰ10min-无水乙醇Ⅱ10min-95%酒精5min-90%酒精5min-80%酒精5min-70%酒精5min-蒸馏水洗(冬天脱蜡时间稍微延长)。 2、修复:切片稍甩干后用组化笔在组织周围画圈(防止液体流走),在圈内滴加蛋白酶K 工作液(蛋白酶K储存液用PBS?1:9稀释)覆盖组织,37度温箱孵育30min。将玻片置于PBS (PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。 3、破膜:切片稍甩干后在圈内滴加破膜工作液覆盖组织,常温下孵育20min,将玻片置于 PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。

冰冻切片免疫荧光染色流程

冰冻切片免疫荧光染色流程 (表面分子,以CD4为例) (1)冰冻切片室温晾干15分钟; (2)用组化油笔将待染组织圈好,置PBS中浸泡10分钟,以去除OCT; (3)用含10%正常山羊血清的PBS室温封闭切片1小时(此步可以不洗涤,把封闭液吸干即可); (4)加入CD4单抗(1:100; SeroTec, Inc, Raleigh, NC, USA),4℃孵育过夜; (5)PBS洗3次,每次10分钟; (6)加入罗丹明标记的羊抗小鼠的IgG二抗(1:50; Sigma公司),37℃孵育1小时; (7)PBS洗3次,每次15分钟; (8)封片后,荧光显微镜观察结果并拍照; (9)在每切片中随机选择5个视野计数阳性细胞数。 注意事项: (1)整个实验过程中勿使表面干燥 (2)稀释、加二抗(荧光抗体)及此后的洗涤过程中注意避光附注1:如目的分子为胞内分子,各种液体中需要加透膜剂 0.3%TrixtonX100。 附注2:所用液体(表面分子染色不用 0.3%TrixtonX100): (1)pH 7.4

0.01MPBS: 配方为: 0.1MPBS 100ml+ddH2O 900ml+NaCl 7.65g 0.1MPBS配方为: Na2HPO4 23g+NaH2PO4﹒2H2O 5.9g+NaCl 17g定容至2000ml,高压,pH 7.2- 7.4 (2)洗涤液: 0.3%TrixtonX100-pH 7.4 0.01MPBS,分装15ml/支-20℃保存 (3)封闭液:10%NGS- 0.3%TrixtonX100-pH 7.4 0.01MPBS,分装 1.2ml/支-20℃保存 (4)抗体稀释液:1%BSA- 0.3%TrixtonX100-pH 7.4

免疫荧光 双标

免疫荧光步骤(双标) 1.冰冻切片制备 将脱水后的脊髓标本放于冰冻托盘上,加OCT使组织被完全包埋,置于冰冻切片机中,调节箱体温度为-22℃,冷冻头温度为-23℃。观察OCT冻成白色固态状时,将其放置于冷冻头,准备切片。设置切片厚度为8µm,必要时用刷子辅助将切好的OCT薄片贴附于载玻片上。室温下晾干载玻片后保存于-20℃冰箱。 2.免疫荧光染色 (1)室温下晾干切片15min,待完全晾干后放置于湿盒内,PBS冲洗浸泡5min/次,3次(以除去OGT)。 (2)抗原修复液(1X)(双蒸水稀释),95-100℃加热约20分钟(加热时间可以控制在10-30分钟内)。20-30分钟内冷却至室温。PBS冲洗5min/ 次,3次。 (3)用滤纸吸干玻片上残余PBS,用免疫组化笔在标本周围画一适当大小圆圈,避免接触标本,将配置好的封闭液(5%驴血清=920ulPBS+50ul驴血清+30ul 10%trition)加入圆圈内,室温下封闭1h。 (4)用滤纸吸去封闭液,向标本加入相应一抗:(1%BSA) 兔源一标:兔抗IL-33(1:50) 小鼠源二标:小鼠抗NeuN(1:500,神经元) 小鼠抗GFAP(1:300,星形胶质细胞) 小鼠抗OX42(1:100,小胶质细胞) 小鼠抗OLIG2(1: 25,少突胶质细胞) 一抗于4℃静置过夜孵育。 (5)次日,PBS洗去一抗,10min/次,3次,用滤纸吸干PBS,之后操作均需避光,向标本加入相应二抗: Dylight 488标记驴抗兔IgG(1:300), Dylight 594标记驴抗小鼠IgG(1:300), 二抗室温静置避光孵育2h。 (6)PBS清洗二抗,10min/次,3次,清洗后晾干后滴加DAPI封片,加盖玻片后于荧光显微镜下拍摄图片并保存。 计划: 1.IL-33组:1)IL-33/NeuN X2个配比浓度 2)IL-33/GFAP X2 3)IL-33/Iba-1 X2 4)只孵二抗X2

免疫荧光双染

精心整理免疫荧光双染 在同一组织细胞标本上需要同时检测两种抗原时,需进行双重荧光染色。双重免疫 荧光标记法(doubleimmunofluorescencelabelingmethod)也分为直接法和间接法。 冰冻切片荧光tunel+免疫荧光双标实验步骤 孵育过夜。(湿盒内加少量水防止抗体蒸发) 7、加二抗:玻片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。切片稍甩干后在 圈内滴加与一抗相应种属的二抗覆盖组织,避光室温孵育50min。 8、 DAPI复染细胞核:切片用PBS(PH7.4)洗涤3次,每次5min。去除PBS后在圈内滴加DAPI 染液,避光室温孵育10min。

抗荧光淬灭封片剂封片。 10、镜检拍照:切片于尼康倒置荧光显微镜下观察并采集图像。(紫外激发波长330-380nm, 发射波长420nm;FITC绿光激发波长465-495nm,发射波长515-555 nm;CY3红光激发波长510-560,发射波长590nm) 石蜡切片荧光tunel+免疫荧光双标实验步骤 6、加一抗:轻轻甩掉封闭液,在切片上滴加PBS按一定比例配好的一抗,切片平放于湿盒内4°C 孵育过夜。(湿盒内加少量水防止抗体蒸发) 7、加二抗:玻片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。切片稍甩干后在圈内滴加与一抗相应种属的二抗覆盖组织,避光室温孵育50min。 8、 DAPI复染细胞核:切片用PBS(PH7.4)洗涤3次,每次5min。去除PBS后在圈内滴加DAPI 染液,避光室温孵育10min。

抗荧光淬灭封片剂封片。 10、镜检拍照:切片于尼康倒置荧光显微镜下观察并采集图像。(紫外激发波长330-380nm, 发射波长420nm;FITC绿光激发波长465-495nm,发射波长515-555 nm;CY3红光激发波长510-560,发射波长590nm) 1、荧光染色后一般在1h内完成观察,或于4℃保存4h,时间过长,可能会使荧光提前衰退。 2 (1) (2) (3)

冰冻切片的免疫组化染色步骤

冰冻切片的免疫组化染色步骤 冰冻切片的免疫组化染色步骤 速冻组织 将组织块平放于软塑料盖或特制小盒内(直径2cm),如组织块小可适量加OCT包埋剂浸没组织,然后将特制小盒缓缓平放入盛有液氮的小杯内,当盒底部接触液氮时即开始气化沸腾,此时小盒保持原位切勿浸入液氮内,大约10-20秒组织即迅速冰冻成块。取出组织冰块立即置入-80℃冰箱储存备用,或置于恒冷切片机冰冻切片。 冰冻切片4~8mm,冰冻切片后如不染色,必须吹干,储存低温冰箱内,或进行短暂预固定后储存冰箱内保存。 室温放置30分钟后,入4℃丙酮固定10分钟。也可根据需要选择其它的固定方式。 PBS洗,5分钟×3。 用3%过氧化氢孵育5~10分钟,消除内源性过氧化物酶的活性。 PBS洗,5分钟×3。 下接石蜡切片免疫组化染色操作步骤(滴加一抗开始)。 石蜡切片免疫组化染色步骤 三步法(以SP试剂盒为例) 1. 石蜡切片脱蜡至水。 2. 蒸馏水冲洗,PBS浸泡5分钟,如需采用抗原修复,可在此步后进行。 3. 3%H2O2室温孵育5~10分钟,以消除内源性过氧化物酶的活性,PBS冲洗,2分钟×3次。 4. 5~10%正常山羊血清封闭,室温孵育10分钟。倾去血清,勿洗,滴加适当比例稀释的一抗或一抗工作液,37℃孵育1~2小时或4℃过夜。

5. PBS冲洗,2分钟×3次。 6. 滴加适当比例稀释的生物素标记二抗(1%BSA-PBS稀释),37℃孵育10~30分钟;或滴加第二代生物素标记二抗工作液,37℃或室温孵育10~20分钟。 7. PBS冲洗,2分钟×3次。 8. 滴加适当比例稀释的辣根酶标记链霉卵白素(PBS稀释),37℃孵育10~30分钟;或第二代辣根酶标记链霉卵白素工作液,37℃或室温孵育10~20分钟。 9. PBS冲洗,2分钟×3次。 10. 显色剂显色(DAB或AEC)。 11. 自来水充分冲洗,复染,脱水透明(如需要)、封片。 二步法(以PV-9000通用型二步法检测试剂盒为例) 1. 石蜡切片脱蜡至水。 2. 蒸馏水冲洗,PBS浸泡5分钟,如需采用抗原修复,可在此步后进行。 3. 3% H2O2室温孵育5~10分钟,以消除内源性过氧化物酶的活性,PBS冲洗,2分钟×3次。 4. 滴加适当比例稀释的一抗或一抗工作液,37℃孵育1~2小时或4℃过夜。 5. PBS冲洗,2分钟×3次。 6. 滴加试剂1(Polymer Helper),室温或37℃孵育20分钟,PBS或TBS冲洗,2分钟×3次。 7. 滴加试剂2(poly peroxidase-anti-mouse/rabbit IgG),室温或37℃孵育20~30分钟,PBS或TBS冲洗,2分钟×3次。 8. PBS冲洗,2分钟×3次。 9. 显色剂显色(DAB或AEC)。 10. 自来水充分冲洗,复染,脱水透明(如需要)、封片。

免疫荧光双染完整版

免疫荧光双染完整版 免疫荧光双染集团标准化办公室:[VV986T-J682P28-JP266L8-68PNN] 免疫荧光双染 在同一组织细胞标本上需要同时检测两种抗原时,需进行双重荧光染色。双重免疫荧光标记法(doubleimmunofluorescencelabelingmethod)也分为直接法和间接法。 冰冻切片荧光tunel+免疫荧光双标实验步骤 1、冰冻切片固定:冰冻切片从冰箱拿出来复温,晾干水分,冷丙酮固定10min,待丙酮完全 干后于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。 2、修复:切片稍甩干后用组化笔在组织周围画圈(防止液体流走),在圈内滴加蛋白酶K 工作液(蛋白酶K储存液用PBS?1:9稀释)覆盖组织,37度温箱孵育30min。将玻片置于PBS (PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。 3、破膜:切片稍甩干后在圈内滴加破膜工作液覆盖组织,常温下孵育20min,将玻片置于 PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。 4、加试剂1,2:按片子数量和组织大小取tunel试剂盒内适量试剂1(TdT)和试剂2(dUTP)按 2:29混合(试剂1,2为现配现用),加到圈内覆盖组织,切片平放于湿盒内,37℃恒温孵育2小时,湿盒内加少量水保持湿度。 5、BSA封闭:将玻片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min,在圈内滴加 用3%BSA均匀覆盖组织,室温封闭30min。 6、加一抗:轻轻甩掉封闭液,在切片上滴加PBS按一定比例配好的一抗,切片平放于湿盒内

4°C孵育过夜。(湿盒内加少量水防止抗体蒸发) 7、加二抗:玻片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。切片稍甩干后在 圈内滴加与一抗相应种属的二抗覆盖组织,避光室温孵育50min。 8、DAPI复染细胞核:切片用PBS(PH7.4)洗涤3次,每次5min。去除PBS后在圈内滴加DAPI染 液,避光室温孵育10min。 9、封片:玻片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。切片稍甩干后用 抗荧光淬灭封片剂封片。 10、镜检拍照:切片于尼康倒置荧光显微镜下观察并采集图像。(紫外激发波长330- 380nm,发射波长420nm;FITC绿光激发波长465-495nm,发射波长515-555?nm;CY3红光激发波长510-560,发射波长590nm)石蜡切片荧光tunel+免疫荧光双标实验步骤 1、石蜡切片脱蜡至水:依次将切片放入二甲苯Ⅰ15-20min-二甲苯Ⅱ15-20min-无水乙醇 Ⅰ10min-无水乙醇Ⅱ10min-95%酒精5min-90%酒精5min-80%酒精5min-70%酒精5min-蒸馏水洗(冬天脱蜡时间稍微延长)。 2、修复:切片稍甩干后用组化笔在组织周围画圈(防止液体流走),在圈内滴加蛋白酶K 工作液(蛋白酶K储存液用PBS?1:9稀释)覆盖组织,37度温箱孵育30min。将玻片置于PBS (PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。 3、破膜:切片稍甩干后在圈内滴加破膜工作液覆盖组织,常温下孵育20min,将玻片置于 PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。 4、加试剂1,2:按片子数量和组织大小取tunel试剂盒内适量试剂1(TdT)和试剂2(dUTP)按 2:29混合,加到圈内覆盖组织,切片平放于湿盒内,37℃恒温箱

免疫荧光双染

免疫荧光双染 Jenny was compiled in January 2021

免疫荧光双染 在同一组织细胞标本上需要同时检测两种抗原时,需进行双重荧光染色。双重免疫荧光标记法(doubleimmunofluorescencelabelingmethod)也分为直接法和间接法。 冰冻切片荧光tunel+免疫荧光双标实验步骤 1、冰冻切片固定:冰冻切片从冰箱拿出来复温,晾干水分,冷丙酮固定 10min,待丙酮完全干后于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。 2、修复:切片稍甩干后用组化笔在组织周围画圈(防止液体流走),在 圈内滴加蛋白酶K工作液(蛋白酶K储存液用PBS?1:9稀释)覆盖组织,37度温箱孵育30min。将玻片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。 3、破膜:切片稍甩干后在圈内滴加破膜工作液覆盖组织,常温下孵育 20min,将玻片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。 4、加试剂1,2:按片子数量和组织大小取tunel试剂盒内适量试剂1(TdT) 和试剂2(dUTP)按2:29混合(试剂1,2为现配现用),加到圈内覆盖组织,切片平放于湿盒内,37℃恒温孵育2小时,湿盒内加少量水保持湿度。

5、BSA封闭:将玻片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min,在圈内滴加用3%BSA均匀覆盖组织,室温封闭30min。 6、加一抗:轻轻甩掉封闭液,在切片上滴加PBS按一定比例配好的一抗,切片平放于湿盒内4°C孵育过夜。(湿盒内加少量水防止抗体蒸发) 7、加二抗:玻片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。切片稍甩干后在圈内滴加与一抗相应种属的二抗覆盖组织,避光室温孵育50min。 8、DAPI复染细胞核:切片用PBS(PH7.4)洗涤3次,每次5min。去除PBS后在圈内滴加DAPI染液,避光室温孵育10min。 9、封片:玻片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次 5min。切片稍甩干后用抗荧光淬灭封片剂封片。 10、镜检拍照:切片于尼康倒置荧光显微镜下观察并采集图像。(紫外激发波长330-380nm,发射波长420nm;FITC绿光激发波长465-495nm,发射波长515-555?nm;CY3红光激发波长510-560,发射波长590nm) 石蜡切片荧光tunel+免疫荧光双标实验步骤 1、石蜡切片脱蜡至水:依次将切片放入二甲苯Ⅰ15-20min-二甲苯Ⅱ15-20min-无水乙醇Ⅰ10min-无水乙醇Ⅱ10min-95%酒精5min-90%酒精5min-80%酒精5min-70%酒精5min-蒸馏水洗(冬天脱蜡时间稍微延长)。 2、修复:切片稍甩干后用组化笔在组织周围画圈(防止液体流走),在圈内滴加蛋白酶K工作液(蛋白酶K储存液用PBS?1:9稀释)覆盖组织,37度温箱孵育30min。将玻片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。

免疫荧光染色SOP

免疫荧光染色SOP 肾活检冰冻切片免疫荧光染 色(直接法) 一.试剂 1.冷冻包埋剂OCT 2.荧光抗体:IgG-FITC (1:100),IgA-FITC(1:200),IgM-FITC(1:300), C3-FITC(1:100), C1q-FITC(1:150) 3.PBS:欧蒙公司试剂盒中附带。(PH值为7.2 ) 4.封片甘油:欧蒙公司试剂盒中附带。(PH值为8.4 )二.取材 1.准备液氮罐、冷冻架、塑料小凹、OCT 2.活检标本取出后,立即浸入塑料小凹OCT中,置液氮罐 内冷冻架上速冻约10秒 3.置恒冷切片机内立即行冰冻切片(切片厚度为3um) 三、固定 1.待冰冻切片充分干燥后,立即放入纯丙酮固定7min,吹干,收至低温冰箱保存。 2.固定后的冰冻切片已干燥,可直接染色,如从低温冰箱取出的冰冻切片,须充分吹干,方可染色。 四、抗原抗体反应过程 1. IgG , C3加一抗前用TBS孵育15min, IgA,IgM ,C1q 加一抗前用10%小牛血清封闭15min。(10%小牛血清为PBS稀释) 2. 去除多余液体,加稀释好的抗体,避光,湿盒内室温孵 育40min

3. 流水冲洗,置95%酒精2min,吹干 4. 甘油封片,荧光显微镜观察结果 五、注意事项 1.冷冻标本时间要掌握好,防止过软或碎裂 2.切片温度需适宜,不宜过高或过低 3.染色过程中必须防止切片干燥,严格避光 4.多聚赖氨酸、丙酮、酒精、缓冲液必须及时定期更换 肾活检石蜡切片免疫荧光染 色(间接法) 一、试剂 一抗:IgG(1:50)IgA(1:50)IgM(1:50)C3(1:50)C1q(1:50)以上均为 DAKO公司产品 1.二抗猪抗兔-FITC ( 1:50,DAKO公司) 2.EDTA(PH=8.0) 3.胃蛋白酶(Invitrogen) 4.PBS:欧蒙公司试剂盒中附带。(PH值为7.2 ) 5.封片甘油:欧蒙公司试剂盒中附带。(PH值为8.4 ) 二、方法 1.光镜石蜡切片脱蜡、入水 2.用高温高压修复15min(EDTA, PH=8.0),冷却后水洗 3.胃蛋白酶室温消化5 min,水洗 4.10%小牛血清封闭(10%小牛血清为PBS稀释) 5.去除多余液体,加稀释好的抗体后,避光,室温或4度过 夜 6.PBS冲洗2min。

免疫荧光双染

免疫荧光双染 在同一组织细胞标本上需要同时检测两种抗原时,需进行双重荧光染色。双重免疫荧光标记法(double immunofluorescence labeling method) 也分为直接法和间接法。 服务说明 冰冻切片荧光tunel+免疫荧光双标实验步骤 1、冰冻切片固定:冰冻切片从冰箱拿出来复温,晾干水分,冷丙酮固 定10min,待丙酮完全干后于PBS( PH 7.4) 中在脱色摇床上晃动洗涤3 次,每次5min。 2、修复:切片稍甩干后用组化笔在组织周围画圈(防止液体流走),在圈内滴 加蛋 白酶K工作液(蛋白酶K储存液用PBS 1:9稀释)覆盖组织,37度温箱孵育 30min。将玻片置于PBS( PH 7.4) 中在脱色摇床上晃动洗 涤 3 次,每次5min。 3、破膜:切片稍甩干后在圈内滴加破膜工作液覆盖组织,常温下孵育 20min,将玻片置于PBS( PH 7.4) 中在脱色摇床上晃动洗涤3 次,每次5min。 4、加试剂1,2:按片子数量和组织大小取tunel 试剂盒内适量试剂

1(TdT和试剂2(dUTP按2:29混合(试剂1,2为现配现用),加到圈内覆 盖组织,切片平放于湿盒内,37C恒温孵育2小时,湿盒内加少量水保持湿 度。 5、B SA封闭: 将玻片置于PBS(PH 7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3 次, 每次5min,在圈内滴加用3%BSA匀匀覆盖组织,室温封闭30min。 6、加一抗: 轻轻甩掉封闭液,在切片上滴加PBS按一定比例配好的一抗,切片平放于湿盒内4 ° C孵育过夜。(湿盒内加少量水防止抗体蒸发) 7、x x: 玻片置于PBS(PH 7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每 次5min。切片稍甩干后在圈内滴加与一抗相应种属的二抗覆盖组织,避光室温 孵育50min。 & DAPI复染细胞核: 切片用PBS(PH 7.4)洗涤3次,每次5min。去除PBS 后在圈内滴加DAPI染液,避光室温孵育10min。 9、封片: 玻片置于PBS(PH

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